{"id":508,"date":"2011-03-15T08:12:54","date_gmt":"2011-03-15T11:12:54","guid":{"rendered":"http:\/\/synbiobrasil.org\/?p=508"},"modified":"2011-03-15T08:12:54","modified_gmt":"2011-03-15T11:12:54","slug":"dispositivos-sinteticos-osciladores","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/www.blogs.unicamp.br\/synbiobrasil\/2011\/03\/15\/dispositivos-sinteticos-osciladores\/","title":{"rendered":"Dispositivos sint\u00e9ticos: osciladores"},"content":{"rendered":"

\"ResearchBlogging.org\"<\/a><\/span>
\nUm oscilador eletr\u00f4nico \u00e9 um circuito el\u00e9trico que produz um sinal eletr\u00f4nico repetitivo, frequentemente uma onda senoidal ou uma onda quadrada. Eles s\u00e3o amplamente utilizados em aparelhos eletr\u00f4nicos, incluindo aparelhos de transmiss\u00e3o de r\u00e1dio e televis\u00e3o.<\/p>\n

Stricker e colaboradores (2008) descrevem a constru\u00e7\u00e3o de um oscilador sint\u00e9tico biol\u00f3gico. Para isso, uma constru\u00e7\u00e3o muito interessante foi utilizada, baseada em um promotor h\u00edbrido Plac\/ara. \u00a0Este promotor possui dois operadores que respondem a dois sinais: ele \u00e9 ativado por AraC na presen\u00e7a de arabinose e \u00e9 reprimido por LacI na aus\u00eancia de IPTG. Seguido a este promotor foi clonado os genes araC, lacI e o gene codificador da prote\u00edna luminescente GFP. Um pulso de IPTG foi utilizado para sincronizar as c\u00e9lulas, dessa maneira, AraC \u00e9 traduzido resultando na ativa\u00e7\u00e3o do sinal luminescente de GFP. Por outro lado, AraC ativa tamb\u00e9m a express\u00e3o de lacI resultando na repress\u00e3o de araC e gfp, cessando o sinal luminescente. Como Lac I causa a repress\u00e3o do pr\u00f3prio lacI, este acaba se reprimindo e um novo ciclo se reinicia (ver figura abaixo).<\/p>\n

\"\"<\/a>O per\u00edodo de oscila\u00e7\u00e3o pode ser ajustado modificando a concentra\u00e7\u00e3o do indutor, por ex, podendo variar o per\u00edodo de 13 a 58\u00a0minutos. Na Figura acima o gr\u00e1fico apresenta um per\u00edodo de 40 minutos. O mais interessante, para mim, \u00e9 que o tempo de gera\u00e7\u00e3o das bact\u00e9rias do experimento varia\u00a0\u00a0de cerca 22 a 27 min, assim, a informa\u00e7\u00e3o e o sincronismo contido no oscilador passa de gera\u00e7\u00e3o em gera\u00e7\u00e3o.<\/p>\n

Foi verificado que a indu\u00e7\u00e3o da oscila\u00e7\u00e3o foi muito r\u00e1pida (cerca de 5 min) e inicialmente bem sincronizada, analisando cada c\u00e9lula individualmente. A amplitude da oscila\u00e7\u00e3o foi caindo com o progresso do experimento, devido a dessincroniza\u00e7\u00e3o gradual de cada c\u00e9lula da col\u00f4nia, como j\u00e1 era de ser esperar. Desse fen\u00f4meno, emerge um pr\u00f3ximo t\u00f3pico da biologia sint\u00e9tica, a comunica\u00e7\u00e3o c\u00e9lula-c\u00e9lula atrav\u00e9s do desenvolvimento de mecanismos de quorum sensing sint\u00e9ticos. Assim, a pr\u00f3prias c\u00e9lulas podem se comunicar para coordenar e sincronizar o seu comportamento. Mas isso \u00e9 assunto para posts futuros.<\/p>\n

Stricker J, Cookson S, Bennett MR, Mather WH, Tsimring LS, & Hasty J (2008). A fast, robust and tunable synthetic gene oscillator. Nature, 456<\/span> (7221), 516-9 PMID: 18971928<\/a><\/span><\/p>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"

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